|
E. PARÁMETROS MICROBIOLÓGICOS
| |
Parámetros |
Resultados volumen de la muestra ( en ml) |
Nivel guía |
Concentración máxima admisible |
| |
|
|
|
Método de membranas filtrantes |
Método de los tubos múltiples ( NPP) |
| 57 |
Coliformes totales (1) |
100 |
- |
0 |
NMP 1 |
| 58 |
Coliformes fecales |
100 |
- |
0 |
NMP 1 |
| 59 |
Estreptococos fecales |
100 |
- |
0 |
NMP 1 |
| 60 |
Clostridiums sulfitorreductores |
20 |
- |
- |
NMP 1 |
Las aguas destinadas al consumo humano no deberán contener organismos patógenos.
A fin de completar, dado que es necesario, el examen microbiológico de
las aguas destinadas al consumo humano, conviene buscar, además de los gérmenes
que figuran en el cuadro E, los gérmenes patógenos, en particular:
- las salmonelas,
- los estafilococos patógenos,
- los bacteriófagos fecales,
- los enterovirus.
Por otro lado, las aguas no deberán contener:
- ni organismos parásitos,
- ni algas,
- ni otros elementos figurados ( animálculos).
(1) Siempre que sea examinado un número suficiente de muestras ( 95 % de
resultados conformes).
| |
Parámetros |
|
Resultados volumen de la muestra ( en ml) |
Nivel guía |
Concentración máxima admisible |
Observaciones |
| 61 |
Recuento de los gérmenes totales en las aguas
destinadas al consumo |
37 ° C |
1 |
10 (1) (2) |
- |
|
| |
|
22 ° C |
1 |
100 (1) (2) |
- |
|
| 62 |
Recuento de los gérmenes totales para las aguas
acondicionadas |
37 ° C |
1 |
5 |
20 |
Los Estados miembros podrán, bajo su responsabilidad,
cuando se respeten los parámetros 57, 58, 59 y 60, y en ausencia de gérmenes
patógenos, acondicionar, para su uso interno, aguas cuyo recuento de gérmenes
totales sea superior a los valores de concentración máxima admisible
prescritos para el parámetro 62 |
| |
|
|
|
|
|
Los valores de concentración máxima admisible habrán
de medirse dentro de las 12 horas siguientes al acondicionamiento,
manteniendo el agua de las muestras a una temperatura constante durante
este período de 12 horas |
| |
|
22 ° C |
1 |
20 |
100 |
|
(1) Para las aguas desinfectadas, los valores correspondientes habrán de
ser netamente inferiores a la salida de la estación de tratamiento.
(2) Toda extralimitación de estos valores que persista durante sucesivas
extracciones de muestras, habrá de estar sujeta a comprobación.
F. CONCENTRACIÓN MÍNIMA EXIGIDA PARA LAS AGUAS DESTINADAS AL CONSUMO
HUMANO QUE HAYAN SIDO SOMETIDAS A UN TRATAMIENTO DE ABLANDAMIENTO
| |
Parámetros |
Expresión de los resultados |
Concentración mínima exigida ( aguas ablandadas) |
Observaciones |
| 1 |
Dureza total |
mg/l Ca |
60 |
Calcio o cationes equivalentes |
| 2 |
Concentración en ión hidrógeno |
pH |
|
El agua no debería ser agresiva |
| 3 |
Alcalinidad |
mg/l HCO3 |
30 |
El agua no debería ser agresiva |
| 4 |
Oxígeno disuelto |
|
|
El agua no debería ser agresiva |
NB:
- Las disposiciones relativas a la dureza, a la concentración en ión
hidrógeno, al oxígeno disuelto y al calcio se aplicarán también a las aguas
que hayan sido sometidas a desalación.
- Si, debido a su excesiva dureza natural, el agua ha sido ablandada con
arreglo al cuadro F, antes de dedicarla al consumo, su contenido en sodio podrá,
en casos excepcionales, ser superior a los valores que figuran en la columna de
las concentraciones máximas admisibles. De todas formas, habrá que esforzarse
por mantener estos niveles lo más bajos que sea posible y no se podrán dejar
de considerar los imperativos impuestos para la protección dela salud pública.
TABLA DE CORRESPONDENCIA ENTRE DISTINTAS UNIDADES DE MEDIDA DE LA DUREZA
DEL AGUA
| |
Grado francés |
Grado inglés |
Grado alemán |
Miligramos de Ca |
Milimoles de Ca |
| Grado francés |
1 |
0,70 |
0,56 |
4,008 |
0,1 |
| Grado inglés |
1,43 |
1 |
0,80 |
5,73 |
0,143 |
| Grado alemán |
1,79 |
1,25 |
1 |
7,17 |
0,179 |
| Miligramos de Ca |
0,25 |
0,175 |
0,140 |
1 |
0,025 |
| Milimoles de Ca |
10 |
7 |
5,6 |
40,08 |
1 |
ANEXO II
MODELOS Y FRECUENCIA DE LOS ANÁLISIS TIPO
A. CUADRO DE LOS MODELOS DE ANÁLISIS TIPO ( parámetros que hay que tomar
en consideración para los controles)
| |
Análisis tipo |
|
|
|
|
| |
Parámetros que hay que considerar |
Control mínimo ( C 1) |
Control corriente ( C 2) |
Control periódico ( C 3) |
Control ocasional para situaciones particulares o
accidentales ( C 4) |
| A |
PARÁMETROS ÓRGANO-LEPTICOS |
olor (1), sabor (1) |
olor, sabor, turbidez, aspecto |
Análisis de control corriente amoniaco + otros parámetros
según la llamada (4) |
La autoridad nacional competente de los Estados
miembros determinará los prámetros (5), según las circunstancias,
tomando en consideración todas las condiciones que podrían tener un
efecto negativo sobre la calidad del agua potable suministrada al
consumidor |
| B |
PARÁMETROS FÍSICO-QUIMICOS |
conductividad u otro parámetro físico-químico cloro
residual (3) |
temperatura (2), conductividad u otro parámetro físico-químico
pH cloro residual (3) |
Análisis de control corriente amoniaco + otros parámetros
según la llamada (4) |
|
| C |
PARÁMETROS NO DESEABLES |
|
nitratos, nitritos, amoniaco |
Análisis de control corriente amoniaco + otros parámetros
según la llamada (4) |
|
| D |
PARÁMETROS TÓXICOS |
|
|
|
|
| E |
PARÁMETROS MICRO-BIOLÓGICOS |
coliformes totales o recuentos totales a 22 ° y 37 °
coliformes fecales |
coliformes totales, coliformes fecales, recuentos
totales a 22 ° y 37 ° |
|
|
NB: Conviene añadir un análisis, denominado de primer examen, que se
realiza en particular antes de poner en explotación un recurso. Los parámetros
que habría que considerar serían los del análisis de control corriente a los
que se podrían añadir, entre otras, diferentes substancias tóxicas o no
deseables, según se presuma. La relación la establecerían las autoridades
nacionales competentes.
(1) Valoración cualitativa.
(2) Excepto para las aguas suministradas acondicionadas.
(3) U otras substancias y sólo en caso de tratamiento.
(4) Estos parámetros los determinarán las autoridades nacionales
competentes, tomando en consideración todas las condiciones que pudieran tener
algún efecto sobre la calidad del agua potable suministrada al consumidor y que
pudieran permitir la valoración del equilibrio iónico de los componentes.
(5) La autoridad nacional competente podrá recurrir a otros parámetros
distintos de los que se mencionan en el Anexo I.
B. CUADRO DE FRECUENCIA MÍNIMA DE LOS ANÁLISIS TIPO (3)
| Volumen de agua producido o distribuido m³/día |
Población afectada ( base de cálculo 200 l/día por
habitante) |
Análisis C1 |
Análisis C2 |
Análisis C3 |
Análisis C4 |
| |
|
Número de muestras/año |
Número de muestras/año |
Número de muestras/año |
|
| 100 |
500 |
(1) |
(1) |
(1) |
Frecuencia que habrán de determinar las autoridades
nacionales competentes, según situaciones particulares |
| 1 000 |
5 000 |
(1) |
(1) |
(1) |
|
| 2 000 |
10 000 |
12 |
3 |
(1) |
|
| 10 000 |
50 000 |
60 |
6 |
1 |
|
| 20 000 |
100 000 |
120 |
12 |
2 |
|
| 30 000 |
150 000 |
180 |
18 |
3 |
|
| 60 000 |
300 000 |
360 (2) |
36 |
6 |
|
| 100 000 |
500 000 |
360 (2) |
60 |
10 |
|
| 200 000 |
1 000 000 |
360 (2) |
120 (2) |
20 (2) |
|
| 1 000 000 |
5 000 000 |
360 (2) |
120 (2) |
20 (2) |
|
(1) La frecuencia se dejará a la iniciativa de las autoridades nacionales
competentes. Sin embargo, el control habrá de hacerse por lo menos una vez al año
por lo que respecta a las aguas destinadas a las industrias alimentarias.
(2) Las autoridades nacionales competentes habrán de esforzarse en
aumentar esta frecuencia con todos los medios de que dispongan.
(3) a) En el caso de aguas que hayan de ser sometidas a un tratamiento de
desinfección, habrá que duplicar la frecuencia de los análisis microbiológicos.
b) En el caso de frecuencia elevada, se recomienda establecer intervalos
lo más regulares que sea posible entre dos muestreos.
c) Cuando los valores de los resultados obtenidos de las muestras extraídas
durante años anteriores sean constantes y significativamente mejores que los límites
previstos en el Anexo I y siempre que no se haya detectado ningún factor que
pueda empeorar la calidad del agua, la frecuencia mínima de los análisis antes
indicados podrá reducirse:
- para las aguas de superficie con un factor 2, exceptuando las
frecuencias relativas a los análisis microbiológicos.
- para las aguas subterráneas con un factor 4, sin perjuicio de lo
dispuesto en la letra a)
ANEXO III
MÉTODOS ANALÍTICOS DE REFERENCIA
A. PARÁMETROS ORGANOLÉPTICOS
| 1 Color |
Método fotométrico calibrado con arreglo a la escala Pt/Co |
| 2 Turbidez |
Método del sílice - Método de la formacina - Método
de Secchi |
| 3 Olor |
Por diluciones sucesivas, mediciones hechas a 12 ° C
o a 25 ° C |
| 4 Sabor |
Por diluciones sucesivas, mediciones hechas a 12 ° C
o a 25 ° C |
B. PARÁMETROS FÍSICO-QUIMICOS
| 5 Temperatura |
Termometria |
| 6 Concentración en ión hidrógeno |
Electrometría |
| 7 Conductividad |
Electrometría |
| 8 Cloruros |
Titrimetría - Método de Mohr |
| 9 Sulfatos |
Gravimetría - Complexometría - Espectrofotometría |
| 10 Sílice |
Espectrofotometría de absorción |
| 11 Calcio |
Absorción atómica - Complexometría |
| 12 Magnesio |
Absorción atómica |
| 13 Sodio |
Absorción atómica |
| 14 Potasio |
Absorción atómica |
| 15 Aluminio |
Absorción atómica - Espectrofotometría de absorción |
| 16 Dureza total |
Complexometría |
| 17 Residuo seco |
Desecado a 180 ° C y pesada |
| 18 Oxígeno disuelto |
Método de Winkler - Método con electrodos específicos |
| 19 Anhídrido carbonico libre |
Acidimetría |
C. PARÁMETROS RELATIVOS A LAS SUBSTANCIAS NO DESEABLES
| 20 Nitratos |
Espectrofotometría de absorción - Método con
electrodos específicos |
| 21 Nitritos |
Espectrofotometría de absorción |
| 22 Amonio |
Espectrofotometría de absorción |
| 23 Nitrógeno Kjeldahl |
Oxidación - Titrimetría/Espectrofotometría de
absorción |
| 24 Oxidabilidad |
KMnO4 hasta ebullición durante 10 minutos en medio ácido |
| 25 Carbono orgánico total ( TOC) |
- |
| 26 Hidrógeno sulfurado |
Espectrofotometría de absorción |
| 27 Substancias extraibles con cloroformo |
Extracción líquida/líquida por medio de cloroformo
purificado con pH neutro pesada del residuo |
| 28 Hidrocarburos ( disueltos o emulsionadas); aceites
minerales |
Espectrofotometría de absorción infrarroja |
| 29 Fenoles ( índice de fenoles) |
Espectrofotometría de absorción, método a la
paranitranilina y método con amino-4-antipirina |
| 30 Boro |
Absorción atómica - Espectrofotometría de absorción |
| 31 Agentes tensoactivos ( que reaccionan con el azul
de metileno) |
Espectrofotometría de absorción con azul de metileno |
| 32 Otros compuestos organoclorados |
Cromatografía en fase gaseosa o líquida después de
extracción por medio de disolventes adecuados y purificación -
Identificación, si fuera necesaria, de los componentes de las mezclas.
Determinación cuantitativa |
| 33 Hierro |
Absorción atómica - Espectrofotometría de absorción |
| 34 Manganeso |
Absorción atómica - Espectrofotometría de absorción |
| 35 Cobre |
Absorción atómica - Espectrofotometría de absorción |
| 36 Zinc |
Absorción atómica - Espectrofotometría de absorción |
| 37 Fósforo |
Espectrofotometría de absorción |
| 38 Fluor |
Espectrofotometría de absorción - Método con
electrodos específicos |
| 39 Cobalto |
- |
| 40 Materias en suspensión |
Método por filtración sobre membrana porosa 0,45 o
centrifugación ( tiempo mínimo 15 m y aceleración media entre 2 800 y
3 200 g) secado a 105 ° C y pesada |
| 41 Cloro residual |
Titrimetría - Espectrofotometría de absorción |
| 42 Bario |
Absorción atómica |
D. PARÁMETROS RELATIVOS A LAS SUBSTANCIAS TOXICAS
| 43 Plata |
Absorción atómica |
| 44 Arsénico |
Espectrofotometría de absorción - Absorción atómica |
| 45 Berilio |
- |
| 46 Cadmio |
Absorción atómica |
| 47 Cianuros |
Espectrofotometría de absorción |
| 48 Cromo |
Absorción atómica - Espectrofotometría de absorción |
| 49 Mercurio |
Absorción atómica |
| 50 Niquel |
Absorción atómica |
| 51 Plomo |
Absorción atómica |
| 52 Antimonio |
Espectrofotometría de absorción |
| 53 Selenio |
Absorción atómica |
| 54 Vanadio |
- |
| 55 Plaguicidas y productos similares |
Ver método contemplado en el punto 32 |
| 56 Hidrocarburos policíclicos aromáticos |
Medición de la intensidad de fluorescencia por
ultravioleta después de extracción con hexano - Cromatografía en fase
gaseosa o medición de la fluorescencia por ultravioleta después de
cromatografía en capas finas. Mediciones comparativas con relación a
una mezcla de seis substancias patrón con la misma concentración (1) |
E. PARÁMETROS MICROBIOLÓGICOS
| 57 (2) Coliformes totales |
Fermentación en tubos múltiples - Traslado de los
tubos positivos en medio de confirmación - Recuento según la cantidad
más probable ( NMP) |
| |
o |
| |
Filtrado sobre membrana y cultivo en medio apropiado
como gelosa lactosada con tergitol, gelosa de endo, caldo de teepol al
0,4 %, traslado e identificación de las colonias sospechosas |
| |
Para los coliformes totales, temperatura de incubación
37 ° C |
| |
Para los coliformes fecales, temperatura de incubación
44 ° C |
| 58 (2) Coliformes fecales |
Fermentación en tubos múltiples - Traslado de los
tubos positivos en medio de confirmación - Recuento según la cantidad
más probable ( NMP) |
| |
o |
| |
Filtrado sobre membrana y cultivo en medio apropiado
como gelosa lactosada con tergitol, gelosa de endo, caldo de teepol al
0,4 %, traslado e identificación de las colonias sospechosas |
| |
Para los coliformes totales, temperatura de incubación
37 ° C |
| |
Para los coliformes fecales, temperatura de incubación
44 ° C |
| 59 (2) Estreptococos fecales |
Método con ácido de sodio ( Litsky). Recuento según
el número más probable |
| |
Filtrado sobre membrana y cultivo en medio apropiado |
| 60 (2) Clostridiums sulfitorreductores |
Después de calentamiento de la muestra a 80 ° C,
recuento de las esporas por: |
| |
- siembra en medio con glucosa, sulfito y hierro y
recuento de las colonias con halo negro, |
| |
- filtrado sobre membrana, depósito del filtro
invertido sobre un medio con glucosa, sulfito y hierro, recubierto de
gelosa, recuento de colonias negras, |
| |
- distribución en tubos de medio "DRCM" (
Differential reinforced clostridia medium) traslado de los tubos negros
en un medio con leche tornasolada, recuento según el número más
probable |
| 61/62 (2) Recuento de los gérmenes totales |
Inoculación por incorporación en gelosa nutritiva |
TESTS COMPLEMENTARIOS
| Salmonelas |
Concentración por filtrado sobre membrana. Inoculación
en medio de enriquecimiento previo. Enriquecimiento, traslado en gelosa
de aislamiento |
| |
- Identificación |
| Estafilococos patógenos |
Filtrado sobre membrana y cultivo en medio específico
( por ejemplo, medio hipersalado de Chapman). Visualización de los
caracteres patógenos. |
| Bacteriófagos fecales |
Técnica de Guelin |
| Enterovirus |
Concentración por filtrado, por floculación o por
centrifugación e identificación |
| Protozoos |
Concentración por filtrado sobre membrana, examen
microscópico, test patogénico |
| Animálculos ( gusanos-larvas) |
Concentración por filtrado sobre membrana - Examen
microscópico - Test patogénico |
F. CONCENTRACIÓN MÍNIMA EXIGIDA
| Alcalinidad |
Acidimetría con anaranjado de metilo |
(1) Substancias patrón que deberán tomarse en cuenta: Fluoranteno, benzo-3,4
fluoranteno, benzo-11,12 fluoranteno, benzo-3,4 pireno, benzo-1,12 perileno e
indeno ( 1,2,3-cd) pireno.
(2) Nota: Por lo que se refiere al período de incubación, éste suele
ser de 24 h o de 48 h, excepto en el caso de los recuentos totales, en los que
es de 48 o de 72 h

|